Выход
Вход/Login
 
E-mail
Пароль/Password
Забыли пароль?
Введите E-mail и жмите тут. Пароль будет выслан на указанный адрес
Войти (LogIn)

 

Если вы первый раз здесь, то зарегистрируйтесь

Регистрация/Sign Up
Полное имя (Ф.И.О.)/Name
E-mail
Телефон/Phone
Зарегистрироваться,
на ваш E-mail будет выслан временный пароль

 

Медицинская литература. Новинки


 

 

 

 

 

 
вce журналы << Анналы хирургической гепатологии << 2015 год << №1 <<
стр.124
отметить
статью

Микробиологическая диагностика и выбор антимикробной терапии инфекции желчевыводящих путей

Фирсова В. Г., Паршиков В. В., Чеботарь И. В., Лазарева А. В., Погорелов А. Г.
Вы можете загрузить полный текст статьи в формате pdf
Фирсова Виктория Глебовна - канд. мед. наук, врач-хирург, анестезиолог-реаниматолог, Городская больница № 35 г. Н. Новгорода, victoria.firsova@mail.ru, 603089, г. Нижний Новгород, ул. Республиканская, д. 47, Российская Федерация
Паршиков Владимир Вячеславович - доктор мед. наук, профессор кафедры госпитальной хирургии им. Б.А. Королева Нижегородской государственной медицинской академии, врач-хирург, анестезиолог-реаниматолог, городская больница № 35 г. Н. Новгорода., Нижегородская государственная медицинская академия; Городская больница № 35 г. Н. Новгорода, 603005, г. Нижний Новгород, площадь Минина и Пожарского, д. 10/1, Российская Федерация
Чеботарь Игорь Викторович - канд. мед. наук, ведущий научный сотрудник лаборатории микробиологии, ФГБУ “Научный центр здоровья детей” РАМН, 119991, г. Москва, проспект Ломоносова, д. 2, Российская Федерация
Лазарева Анна Валерьевна - канд. мед. наук, заведующая лабораторией микробиологии, ФГБУ “Научный центр здоровья детей” РАМН, 119991, г. Москва, проспект Ломоносова, д. 2, Российская Федерация
Погорелов Александр Григорьевич - доктор биол. наук, профессор, ведущий научный сотрудник, Институт теоретической и экспериментальной биофизики РАН, 142290, Московская обл., г. Пущино, ул. Институтская, д. 3, Российская Федерация

Цель. Проиллюстрировать сложность идентификации микробов-возбудителей катетер-ассоциированной инфекции желчевыводящих путей, показать различия в чувствительности к антибиотикам микроорганизмов, находящихся в биопленочной и планктонной формах. Материал и методы. Пациент с псевдокистой головки поджелудочной железы, осложненной механической желтухой, оперирован двухэтапно. Выполнена холецистостомия под контролем УЗИ, в дальнейшем - холецистэктомия, резекция головки поджелудочной железы с формированием цистопанкреато- и гепатикоеюноанастомоза на выключенной петле тощей кишки, дренирование общего желчного протока через культю пузырного протока. Течение послеоперационного периода осложнилось рецидивирующим холангитом. Проведен микробиологический анализ отделяемого по дренажу с определением чувствительности к антимикробным препаратам традиционным способом. Поверхность дренажа исследована с помощью сканирующей электронной микроскопии. Для идентификации возбудителей использована масс-спектрометрия. Осуществлено моделирование биопленок на основе изолятов, выделенных с катетера, определена чувствительность микроорганизмов в составе биопленки. Результаты. При исследовании отделяемого по дренажу выделены Pseudomonas aeruginosa и Candida albicans. На поверхности дренажа выявлена биопленка, образованная не только двумя перечисленными возбудителями, но и микроорганизмами семейства Streptococcaceae. Штамм P. aeruginosa был не способен образовывать биопленку, но мог “встраиваться” в биопленку, сформированную C. albicans. В составе биопленки синегнойные палочки и кандиды утратили чувствительность к антимикробным препаратам, имевшуюся при существовании их в планктонной форме. Заключение. Установка катетера в желчные протоки связана с формированием на его поверхности биопленки. Рутинное микробиологическое исследование не всегда позволяет оценить спектр микробов-возбудителей. Традиционно определяемая чувствительность к антибиотикам планктонных форм не соответствует таковой при нахождении микроорганизмов в биопленке. Наружное желчеотведение ликвидирует холестаз, но не бактериохолию. Адекватное лечение инфекции желчевыводящих путей возможно при учете всех перечисленных факторов, важнейшим условием является восстановление оттока желчи в тонкую кишку.

Ключевые слова:
механическая желтуха, холангит, катетер-ассоциированная инфекция, биопленки, антибиотикорезистентность, obstructive jaundice, cholangitis, catheter-associated infection, biofilms, antibiotic resistance

Литература:
1.van Walraven C., Musselman R. The Surgical Site Infection Risk Score (SSIRS): A model to predict the risk of surgical site infections. PLoS One. 2013; 8 (6): e67167. PMID: 23826224
2.Trautner B.W., Darouiche R.O. Catheter-associated infections: pathogenesis affects prevention. Arch. Intern. Med. 2004; 164 (8): 842-850. PMID: 15111369
3.Donlan R.M., Costerton J.W. Biofilms: survival mechanisms of clinically relevant microorganisms. Clin. Microbiol. Rev. 2002; 15 (2): 167-193. PMID: 11932229
4.Чеботарь И.В., Маянский А.Н., Кончакова Е.Д., Лазарева А.В., Чистякова В.П. Антибиотикорезистентность биопленочных бактерий. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2012; 14 (1): 51-58.
5.Guaglianone E., Cardines R., Vuotto C., Di Rosa R., Babini V., Mastrantonio P., Donelli G. Microbial biofilms associated with biliary stent clogging. FEMS Immunol. Med. Microbiol. 2010; 59 (3): 410-420. doi: 10.1111/j. 1574-695X.2010.00686.x. PMID: 20482630
6.Donelli G., Guaglianone E., Di Rosa R., Fiocca F., Basoli A. Plastic biliary stent occlusion: factors involved and possible preventive approaches. Clin. Med. Res. 2007; 5 (1): 53-60. PMID: 17456835
7.Scheithauer B.K., Wos-Oxley M.L., Ferslev B., Jablonowski H., Pieper D.H. Characterization of the complex bacterial communities colonizing biliary stents reveals a host-dependent diversity. ISME J. 2009; 3 (7): 797-807. doi: 10.1038/ ismej.2009.36. PMID: 19360025
8.Ахаладзе Г.Г. Холедохолитиаз. Холангит и билиарный сепсис: где граница? Анналы хирургической гепатологии. 2013; 18 (1): 54-58.
9.Маянский Н.А., Калакуцкая А.Н., Мотузова О.В., Ломинадзе Г.Г., Крыжановская О.А., Катосова Л.К. MALDI-TOF масс-спектрометрия в рутинной работе микробиологической лаборатории. Вопросы диагностики в педиатрии. 2011; 3 (5): 20-25.
10.Esteban J., Molina-Manso D., Spiliopoulou I., Cordero-Ampuero J., Fernandez-Roblas R., Foka A., Gomez-Barrena E. Biofilm development by clinical isolates of Staphylococcus spp. from retrieved orthopedic prostheses. Acta Orthop. 2010; 81 (6): 674-679. doi: 10.3109/17453674.2010.537810. PMID: 21110701
11.Хабриев Р.У., Герасимов В.Б., Кукес В.Г., Арзамасцев В.П. Антибактериальные лекарственные средства. Методы стандартизации препаратов. Под ред. Хабриева Р.У. М.: Медицина, 2004. 944 с.
12.Christensen G.D., Simpson W.A., Younger J.J., Baddour L.M., Barrett F.F., Melton D.M., Beachey E.H. Adherence of coagulase-negative staphylococci to plastic tissue culture plates: a quantitative model for the adherence of staphylococci to medical devices. J. Clin. Microbiol. 1985; 22 (6): 996-1006. PMID: 3905855
13.Herzog T., Belyaev O., Muller C.A., Mittelkotter U., Seelig M.H., Weyhe D., Felderbauer P., Schlottmann R., Schrader H., Schmidt W.E., Uhl W. Bacteribilia after preoperative bile duct stenting: a prospective study. J. Clin. Gastroenterol. 2009; 43 (5): 457-462. doi: 10.1097/MCG.0b013e318186b19b. PMID: 19276992
14.Паршиков В.В., Измайлов C.E, Медведев А.П., Самсонов А.А., Романов Р.В., Самсонов А.В., Градусов В.П., Петров В.В., Ходак В.А. Антибактериальная терапия при гнойном холангите. Анналы хирургической гепатологии. 2009; 14 (2): 33-37.
15.Гальперин Э.И., Ахаладзе Г.Г., Котовский А.Е., Глебов К.Г., Чевокин А.Ю., Момунова О.Н. Патогенез и лечение острого гнойного холангита. Анналы хирургической гепатологии. 2009; 14 (4): 13-21.
16.Даценко Б.М., Борисенко В.Б. Механическая желтуха, острый холангит, билиарный сепсис: их патогенетическая взаимосвязь и принципы дифференциальной диагностики. Новости хирургии. 2013; 21 (5): 31-39.
17.Maillot N., Aucher P., Robert S., Richer J.P., Bon D., Moesch C., Grollier G., Irani J., Carretier M., Beauchant M. Polyethylene stent blockage: a porcine model. Gastrointest. Endosc. 2000; 51 (1): 12-18. PMID: 10625788
18.Pierce G.E. Pseudomonas aeruginosa, Candida albicans, and device-related nosocomial infections: implications, trends, and potential approaches for control. J. Ind. Microbiol. Biotechnol. 2005; 32 (7): 309-318. PMID: 15868157
19.Бухарин О.В., Гинцбург А.Л., Романова Ю.М., Эль-Регистан Г.И. Механизмы выживания бактерий. М.: Медицина, 2005. 367 с.

Microbiological Diagnosis and Choice of Antibacterialis Therapy of Biliary Tract Infection

Firsova V. G., Parshikov V. V., Chebotar’ I. V., Lazareva A. V., Pogorelov A. G.

Aim. To show the difficulties in identification of pathogenic organisms of catheter-associated biliary infection and to demonstrate the differences in antibiotic sensitivity of microbes in biofilms and planktonic form. Materials and Methods. The patient with pancreatic head pseudocyst complicated by obstructive jaundice underwent two-stage surgery. Ultrasound-assisted cholecystostomy was performed followed by cholecystectomy. Further there were pancreatic head resection with cystopancreato- and hepaticojejunal anastomosis on excluded jejunal loop and common bile duct drainage through the cystic duct. The postoperative period was complicated by recurrent cholangitis. We carried out the microbiological analysis of drainage discharge with the assessment of antibiotic sensitivity according to conventional technique. The drainage surface was studied using scanning electron microscopy. Mass spectrometry was applied for microorganisms’ identification. Biofilms were modeled based on isolates obtained from the catheter; antibiotic sensitivity of microorganisms in biofilm was determined. Results. Pseudomonas aeruginosa and Candida albicans were isolated in the discharge from cystic duct drainage. The biofilm found on drainage surface consisted of Streptococcaceae strains except for those mentioned above. P. aeruginosa strain could not form biofilm, though it could be built in the biofilm formed by C. albicans. P. aeruginosa and C. albicans as part of biofilm lost their sensitivity to antimicrobial agents they had when being in plankton. Conclusion. Bile ducts drainage is associated with biofilm formation on catheter surface. Routine microbiological study does not always enable to evaluate the range of microbial pathogens. Traditionally determined antibiotic sensitivity of planktonic forms does not correspond that when microorganisms are in biofilm. External bile draining eliminates cholestasis rather than bacteriocholia. Adequate treatment of biliary infection should take into consideration all the above mentioned factors; restoration of bile outflow in small intestine is the most important condition.

Keywords:
механическая желтуха, холангит, катетер-ассоциированная инфекция, биопленки, антибиотикорезистентность, obstructive jaundice, cholangitis, catheter-associated infection, biofilms, antibiotic resistance

ООО Издательский дом ВИДАР-М, 2016