Медицинская литература. Новинки

 

 

 

 

 

 

Адгезивная активность микроорганизмов в выборе дренажного полимера и местных антисептиков при инфицированном панкреонекрозе

Вы можете загрузить полный текст статьи в формате pdf

Цель. Изучить особенности формирования биопленок ассоциантами инфицированного панкреонекроза на дренажных полимерах, определить наиболее эффективные средства локального антисептического воздействия по результатам оценки in vitro. Материал и методы. Изучены клинические штаммы микроорганизмов из содержимого сальниковой сумки больных инфицированным панкреонекрозом: A. baumannii, P. aeruginosa и MRSA, а также типовые штаммы MSSA. Способность микроорганизмов к образованию биопленок оценивали на поверхности тестируемых дренажных полимеров (силикона, латекса, поливинилхлорида) в 96луночной полистироловой панели. Эффективность антисептического воздействия оценивали по отношению к микроорганизмам в составе биопленки и планктона. Результаты. Максимальной способностью к стимуляции роста ассоциантов инфицированного панкреонекроза обладал латекс. A. baumannii проявлял минимальную адгезивную активность к силикону, S. aureus – к поливинилхлориду. Штаммы P. aeruginosa демонстрировали худшие показатели роста в жидкой среде с силиконом, без различий по интенсивности образования пленки на поливинилхлориде и силиконе. Находясь в биопленке, микроорганизмы проявляли большую устойчивость к действию распространенных в практике растворов антисептиков. Вне зависимости от формы существования микроорганизма лавасепт оказывал бактерицидный эффект на A. baumannii, мирамистин – на S. aureus, диоксидин – на P. aeruginosa. Исследованные штаммы как в планктоне, так и в составе биопленки проявляли резистентность к обработке 0,02% водным раствором хлоргексидина и озонированным физиологическим раствором (8 мг/л), чувствительность – к пятиминутной обработке озонокислородной газовой смесью в концентрации 40 мг/л. Заключение. Оптимальными сочетаниями дренажных полимеров и антисептиков для локальной санации очагов панкреатогенной деструкции являются поливинилхлорид и мирамистин при инфекции, вызванной S. aureus, силикон и лавасепт – при обнаружении A. baumannii, силикон и диоксидин – при выявлении P. aeruginosa. Результаты оценки бактерицидного действия озонокислородной смеси определяют необходимость изучения безопасности ее интраперитонеального использования.

Ключевые слова:
инфицированный панкреонекроз, адгезивная активность, микробные биопленки, антисептики, дренажные полимеры.

Литература:
1. Кубышкин В.А. Панкреонекроз. Анналы хирургической гепатологии. 2000; 5 (2): 67–68.
2. Деллинджер Э.П. Инфекционные осложнения панкреатита.
Клиническая микробиология и антимикробная химиотера
пия. 2003; 2: 108–117.
3. Ермолов А.С., Иванов П.А., Гришин А.В., Благовестнов Д.А.
Патогенетические подходы к диагностике и лечению ост
рого панкреатита. Хирургия. 2007; 5: 4–8.
4. Uhl W., Warshaw A., Imrie C., Bassi С., McKay С.J., Lankisch P.G., Carter R., Di Magno E., Banks P.A., Whitcomb D.S.,
Dervenis C., Ulrich C.D., Satake K., Ghaneh P., Hartwig W.,
Werner J., McEntee G., Neoptolemos J.P., Büchler M.W. IAP
Guidelines for the surgical management of acute pancreatitis.
Pancreatology. 2002; 2 (6): 565–573.
5. Banks P.A., Freeman M.L. Practice guidelines in acute pancreatitis. Am. J. Gastroenterol. 2006; 101 (10): 2379–2400.
6. Bradley E.L. 3rd, Dexter N.D. Management of severe acute pan
creatitis: a surgical odyssey. Ann. Surg. 2010; 251 (1): 6–17.
7. Ahmad H.A., Samarasam I., Hamdorf J.M. Minimally invasive
retroperitoneal pancreatic necrosectomy. Pancreatology. 2011;
11 (1): 52–56.
8. Бурневич С.З., Гельфанд Б.Р., Орлов Б.Б., Цыденжапов Е.Ц.
Деструктивный панкреатит: современное состояние пробле
мы. Вестник хирургии им. И.И. Грекова. 2000; 2: 116–123.
9. Тарасенко В.С., Никитенко В.И., Кубышкин В.А. Острый
панкреатит и транслокация бактерий. Вестник хирургии
им. И.И. Грекова. 2000; 6: 86–88.
10. Перьянова О.В., Мальцева О.Е., Осипова Н.П., Теплякова О.В., Кублицкая Л.И., Капустина Е.А., Смотров С.В., Курчицкий А.А. Антибиотикочувствительность микрофлоры
при деструктивных формах острого панкреатита. Сибирский медицинский журнал. 2006; 4: 22–25.
11. Van Minnen L.P., Blom M., Timmerman H.M., Visser M.R.,
Gooszen H.G., Akkermans L.M.A. The use of animal models to
study bacterial translocation during acute pancreatitis. J.
Gastrointest. Surg. 2007; 11 (5): 682–689.
12. Петрова Е.В. Роль госпитальной инфекции у больных с деструктивным панкреатитом: автореф. дисс. … канд. мед.
наук. М., 2008. 18 с.
13. Гучев И.А., Волков И.П., Иванова А.М. Панкреонекроз. Возможности антибактериальной терапии и профилактики.
Русский медицинский журнал. 2007; 12: 965–972.
14. Фадеева Т.В., Садах М.В., Верещагина С.А., Григорьев Е.Г.
Данные мониторинга и антибактериальная терапия инфицированного панкреонекроза. Инфекции в хирургии. 2010;
2: 17–23.
15. Raza S.S., Malde D.J., Khan N., Aldouri A., Menon K.,
Smith A.M. Outcome of minimally invasive pancreatic necrosectomy without irrigation. Pancreatology. 2012; 12 (3): 13–14.
16. Wu B.U., Johannes R.S., Kurtz S., Banks P.A. The impact of hos
pitalacquired infection on outcome in acute pancreatitis.
Gastroenterology. 2008; 135 (3): 816–820.
17. Ильина Т.С., Романова Ю.М., Гинцбург А.Л. Биопленки как
способ существования бактерий в окружающей среде и организме хозяина: феномен, генетический контроль и системы регуляции их развития. Генетика. 2004; 11:
1445–1456.
18. Плакунов В.К., Стрелкова Е.А., Журина М.В. Персистенция
и адаптивный мутагенез в биопленках. Микробиология.
2010; 79 (4): 447–458.
19. Donlan R.M., Costerton J.W. Biofilms: survival mechanisms of
clinically relevant microorganisms. Clin. Microbiol. Rev. 2002;
15 (2): 167–193.
20. Conway B.A., Venu V., Speert D. Biofilm formation and acyl
homoserine lactone production in the Burkholderia cepacia
complex. Bacteriol. 2002; 184 (20): 5678–5685.
21. Harriott M.M., Noverr M.C. Candida albicans and Staphylococcus aureus form polymicrobial biofilms: effects on antimicrobial resistance. Antimicrobial agents and chemotherapy. 2009;
53 (9): 3914–3922.
22. Гинцбург А.Л., Ильина Т.С., Романова Ю.М. “Quorum sensing”
или социальное поведение бактерий. Журнал микробиологии, эпидемиологии, иммунобиологии. 2003; 5: 86–93.
23. Сидоренко С.В. Роль бактериальных биопленок в патологии
человека. Инфекции в хирургии. 2004; 2 (3): 16–20.
24. Кузнецов О.Ю. Бактериальная колония как сложно организованное сообщество клеток. Журнал микробиологии, эпидемиологии, иммунобиологии. 2005; 2: 3–7.
25. Фадеев С.Б., Немцева Н.В. Формирование биопленок возбудителями хирургической инфекции мягких тканей. Журнал микробиологии, эпидемиологии, иммунобиологии.
2009; 4: 114–117.
26. Афиногенова А.Г., Даровская Е.Н. Микробные биопленки
ран: состояние вопроса. Травматология и ортопедия России. 2011; 61 (3): 119–125.
27. О'Toole G.A. То build a biofilm. J. Bacteriol. 2003; 185 (9):
2687–2689.
28. Буткевич А.Ц., Чадаев А.П., Лапин А.Ю., Свиридов С.В.
Открытые дренирующие операции в хирургическом лечении распространенного инфицированного панкреонекроза. М.: Граница, 2007. 390 c.
29. Kozarek R.A. Pancreaticobiliary biofilm: is cholesterol the
answer? Gut. 2005; 54 (3): 326–328.
30. Swidsinski A., Schlien P., Pernthaler A., Gottschalk U., Bärlehner E., Decker G., Swidsinski S., Strassburg J., Loening%Baucke V.,
Hoffmann U., Seehofer D., Hale L.P., Lochs H. Bacterial biofilm
within diseased pancreatic and biliary tracts. Gut. 2005; 54 (3):
388–395.
31. Миллер С.В., Винник Ю.С., Теплякова О.В. Лечение больных
острым деструктивным панкреатитом. Хирургия. Журнал
им. Н.И. Пирогова. 2012; 5: 24–30.
32. Зубков М.Н. Сбор, транспортировка биологического материала и трактовка результатов микробиологических исследований. Клиническая микробиология и антимикробная
химиотерапия. 2004; 2: 143–154.
33. Миллер С.В., Винник Ю.С., Теплякова О.В., Перьянова О.В.
Динамика этиологической структуры и антибиотикочувствительности микрофлоры инфицированного панкреоне
кроза. Анналы хирургии. 2011; 5: 54–61.
34. Челышева Г.М., Шалыгина Т.Н. Определение чувствительности микроорганизмов к антисептикам: методические рекомендации. Новокузнецк, 2008. 15 c.

Microbial Adhesion Activity on Choosing Drainage Polymer and Local Antiseptics in Patients with Pancreonecrosis

Aim. To explore specific features of biofilm formation on draining tubes polymers by microbial associations from infected pancreonecrotic lesions. To identify the most potent local antiseptic for biofilm control based on in vitro studies. Materials and Methods. Clinical strains of A. baumannii, P. aeruginosa, and MRSA from omentum sac samples in patients with infected pancreonecrosis, as well as standard sample MSSA strains. Microorganisms potential to form biofilms was tested on the surface of drain tube polymers (silicone, latex, PVC) in 96well polystyrene panel. Potency of different antiseptics was tested against biofilm and planctonic microorganisms. Results. Latex was the most favorable media stimulating growth of bacterial associations derived from pancreonecrotic lesions. A. baumannii demonstrated the minimal adhesion potential on silicone surface, whilst S. aureus – on PVC surface. P. aeruginosa strains demonstrated poorest growth in liquid siliconecontaining media showing no significant difference in biofilm formation both on PVC and silicone surfaces. Microorganisms incorporated into a biofilm were much more resistant to most common antiseptics. Bactericidal effect against both planctonic and biofilm forms was observed with Lavasept – against A. baumannii, with miramystine – against S. aureus, and dioxydine – against P. aeruginosa. All studied strains were resistant – both in planctonic state and in biofilm – to 0.2% Chlorhexidine, to ozonized saline (8 mg/L), and were sensitive to 5minute treatment with ozoneoxygen gaseous mixture 40 mg/L. Conclusion. Optimal combination of draintubes polymers and antiseptics for local bactericidal treatment of pancreatic destruction lesions are PVC and Miramisitne in case of S. aureus infection, silicone and Lavasept – in case of A. baumannii infection, and silicone and Dioxidine – in case of P. aeruginosa infection. Identified bactericidal potential of ozoneoxygen mixture should be additionally evaluated for safe

Keywords:
infected pancreonecrosis, adhesion activity, microbial biofilms, antiseptics, drain tube polymers.